表面与胞内流式细胞术染色方案
表面与胞内流式细胞术染色方案及斯达特相关产品推荐
表面与胞内流式细胞术染色方案概述
表面与胞内流式细胞术染色方案系统梳理了从样品制备、表面染色到胞内抗原检测的完整流式实验流程,斯达特(Starter)提供覆盖全流程的关键配套试剂,助力实验高效顺利进行。

一、样品收集与制备
1. 获取细胞或组织,在细胞染色缓冲液中制备单细胞悬液;
(可选)对于实体组织:加入约20mL缓冲液,400×g离心5min,弃上清
2. 裂解红细胞:如需(如外周血),向样品中加入5-10倍体积的1×裂解液,室温孵育3-5min。
⚠️ 注意:使用前将裂解液平衡至室温
3. 加入等体积细胞染色缓冲液终止裂解。3000 rpm离心5min,弃上清;重复步骤一次
4. 计数活细胞,用缓冲液重悬至10⁷ 细胞/mL
二、Fc受体封闭
5. 对于人源细胞,在1 mL细胞悬液(≤ 10⁷ 个细胞)中加入20 μL人FcR封闭试剂,冰上孵育30min或室温10min;400×g离心3min,弃上清
三、表面染色
6. 用缓冲液将细胞重悬至5-10 × 10⁶ 细胞/mL,向每管分装100μL
7. 加入最适浓度的一抗,冰上避光孵育30min
8. 400×g离心3min,弃上清。加入至少1mL缓冲液重悬洗涤;重复洗涤一次
9. 若使用纯化一抗,加入最适浓度荧光二抗,冰上避光孵育20-30min;重复洗涤两次
10. 按说明书稀释可固定活力染料。每管加100 μL,室温孵育10-20min
11. 400×g离心3min,弃上清,用1mL缓冲液洗涤一次;最后加入200μL 上机分析
四、胞内抗原染色(表面染色后进行胞内染色)
12. 每管加100 μL固定/破膜缓冲液,涡旋混匀;4°C避光孵育30min
13. 加100 μL破膜缓冲液,300g离心5min,弃上清
14. 用100 μL破膜缓冲液重悬细胞;加入适量细胞因子胞内抗体,4℃避光孵育30min
15. 用2ml流式染色缓冲液洗涤两次
16. 若仅标记一抗,加入200 μL染色缓冲液后上机;(若需标记二抗或链霉亲和素,重复步骤14-15)
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