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UA-Glo® Glycogen Luminescence Detection Kit

UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒

价格 3,720.00 1-2周
货号 UA079050
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产品介绍 评论(0)

背景介绍
  • UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒通过两步反应来检测样品中糖原的含量。第一步反应通过葡萄糖淀粉酶(1,4-α-D-Glucan glucohydrolase, Glucoamylase) 将糖原消化为葡萄糖;第二步反应通过葡萄糖脱氢酶,还原酶和荧光素酶的偶联反应检测葡萄糖含量。葡萄糖脱氢酶作用于葡萄糖使NADP还原为NADPH, 还原酶则利用NADPH将还原酶底物 (也是荧光素前体) 还原为荧光素,最后荧光素经荧光素酶作用产生发光而被检测,其发光强度和葡萄糖含量呈正比。

    UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒为均质型检测试剂,简单的两步实验减少了多次加样可能导致的实验误差。该试剂具有信噪比高、重复性好、稳定性好的特点,适合多种样品的批量处理。

产品规格
  • 分子别名

    UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒
  • 储存条件

    干冰运输。避光储存于-80℃,有效期见试剂瓶标签。初次使用后建议将试剂按需分装避光-80℃保存,最好分装为单次使用量。还原酶底物和荧光素检测液冻融不超过3次。0.3N HCl和Tris 缓冲液可保存于4℃。

产品组分
  • UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒组分和规格如下。可检测的96-孔板反应数按照每孔加入25 μL样品、25 μL 葡萄糖淀粉酶消化液和50 μL葡萄糖检测试剂计算。

    规格

    组分

    96-孔板反应数

    5ml

    葡萄糖淀粉酶:15 μL

    葡萄糖淀粉酶缓冲液:3 mL

    荧光素检测液:5 mL

    还原酶底物:25 μL

    糖原 (2mg/mL)50 μL

    葡萄糖 (10mM)50 μL

    0.3N HCl15 mL

    Tris 缓冲液:15 mL

    100

    50ml

    葡萄糖淀粉酶:150 μL

    葡萄糖淀粉酶缓冲液:30 mL

    荧光素检测液:50 mL

    还原酶底物:250 μL

    糖原(2mg/mL)50 μL

    葡萄糖(10mM)50 μL

    0.3N HCl15 mL

    Tris 缓冲液:15 mL

    1,000


操作步骤
  • UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒通过葡萄糖淀粉酶将糖原消化为葡萄糖,再由葡萄糖脱氢酶,还原酶和荧光素酶的偶联反应检测葡萄糖含量。荧光素酶反应有极高的灵敏度,并且pH,温度,实验系统设定等参数对反应均有较大影响,多数实验条件下不建议直接比较样品绝对读值。建议在每块实验板设定同样的参照化合物和溶剂载体对照,实验样品读值用参照化合物和溶剂载体对照读值归一化后再进行数据处理和比较。也可以在每块实验板设立和样品同样方式处理的糖原标准品以定量样品的糖原含量。

    3.1样品处理

    UA-Glo® 糖原发光法检测试剂可用于检测细胞裂解液和组织匀浆等样品中的糖原浓度。糖原线性最高检测浓度为20μg/mL。如果样品糖原浓度 >20μg/mL可以参考下表对样品做适当的处理和稀释,或用户根据具体实验优化样品稀释度。

    建议使用试剂盒中的0.3N HClTris 缓冲液 (450mM Tris, pH-8.0) 进行样品处理。0.3N HCl的酸处理可以快速裂解细胞和终止细胞代谢,并且灭活细胞内的酶和降解还原型NAPD(P)H,如此处理后细胞内的酶和还原型NAPD(P)H就不会干扰后续的糖原检测。酸处理后,在样品中加入Tris 缓冲液,pH值略有升高,但不会使酸处理失效。0.3N HClTris 缓冲液 (450mM Tris, pH-8.0) 的组合可以确保在加入葡萄糖淀粉酶缓冲液后pH值达到葡萄糖淀粉酶反应的最佳pH: 约为pH50.3N HClTris 缓冲液处理后的样品可以立即检测或保存于-20及以下在未来检测。对于难于裂解的样品,例如3D样品,可以在0.3N HCl中加入终浓度为0.2% Triton X 100使代谢物质更有效的释放。

    组织匀浆建议用1体积的PBS1/2体积的0.3N HCl匀浆液进行,匀浆组织后加入1/2体积的Tris 缓冲液。或按下表匀浆后立即依次加入0.3N HClTris 缓冲液。组织的糖原含量差异较大,对于含有高浓度糖原的组织,例如肝组织需要稀释到适当浓度后检测,稀释液为PBS+0.3N HCl+Tris 缓冲液,体积比为2:1:1

    样品

    样品糖原浓度

    样品处理

    细胞裂解产物(细胞内)

    1-10 μg/mL: 60 μL处理后的样品 (20,000个细胞)

    细胞在1样品体积的PBS

    加入1/2样品体积的0.3N HCl

    加入1/2样品体积的Tris缓冲液

    组织

    10 μg/mL: 例如5-15 mg肝组织1 mL匀浆液中匀浆后稀释50-100

    1样品体积PBS匀浆组织

    加入1/2样品体积的0.3N HCl

    加入1/2样品体积的Tris缓冲液


    3.2糖原检测实验

    3.2.1样品糖原检测

    1)96-孔白色 (底不透明) 实验板加入3.1处理的样品25μL每孔。阴性对照为和样品同样处理的无糖原/葡萄糖培养基或缓冲液,阳性对照可以用和样品同样处理的糖原标准品。荧光素酶反应对温度变化敏感。检测试剂和样品需要平衡至室温(22-25),测试过程温度保持恒定 (±1)

    2)取出葡萄糖淀粉酶缓冲液,室温完全融化后颠倒充分混匀,取实验所需体积,剩余葡萄糖淀粉酶缓冲液可按需分装保存于-20

    3)葡萄糖淀粉酶于室温融化,置于冰上。葡萄糖淀粉酶母液为200x,用葡萄糖淀粉酶缓冲液配为1x葡萄糖淀粉酶消化液,颠倒充分混匀。消化液按需现配现用,不建议保存。剩余葡萄糖淀粉酶立即按需分装,保存于-80

    4)每孔加入25μL葡萄糖淀粉酶消化液,振板1min混匀

    5)室温孵育60min

    6)取出UA-Glo® 糖原发光法检测试剂盒的荧光素检测液,完全融化后颠倒充分混匀。取实验所需体积的荧光素检测液,平衡至室温。剩余荧光素检测液按需分装,保存于-80。荧光素检测液冻融次数不超过3

    7)葡萄糖检测试剂配置:检测前取出还原酶底物室温融化,置于冰上200x加入荧光素检测液,颠倒充分混匀,此为葡萄糖检测试剂。葡萄糖检测试剂配置后应立即使用,否则会增加检测背景值。检测试剂按需现配现用,不建议保存。剩余还原酶底物立即按需分装,避光保存于-80,还原酶底物冻融次数不超过3

    8)每孔加入葡萄糖检测试剂50μL。处理后的样品加入的体积、葡萄糖淀粉酶消化液体积和葡萄糖检测试剂的比例应为1:1:2。例如用低容积384-孔板检测时,可以加入5μL处理后的样品、5μL葡萄糖淀粉酶消化液和10μL检测试剂进行检测

    9)振板1min混匀放置暗处孵育60-90min。检测信号会持续增加,直至所有的葡萄糖被消耗完,信号强度在检测范围内保持线性

    10)在发光或多功能读板仪上读取发光信号

    3.2.2细胞培养板细胞裂解物糖原检测

    1)96孔细胞培养板接种合适密度的实验细胞,例如每孔5,000-50,000细胞

    2)根据实验需要进行细胞处理;

    3)弃去培养基,200μL 冷的PBS 洗细胞五次以去除培养基残存葡萄糖。培养基中的高浓度葡萄糖需要通过PBS洗涤去除;此步应快速操作以尽量减少糖原代谢的变化

    4)每孔加入30μL PBS

    5)每孔加入15μL0.3N HCl溶液,振荡5min混匀。PBS0.3N HCl也可以按21混合后一起加入实验板,即每孔加入45μL此混合液,振板5min混匀

    6)加入15μLTris 缓冲液 (450mM, pH-8.0),振荡1min混匀

    7)如有需要,可将样品保存于-20及以下在未来检测

    8)96白色 (底不透明) 实验板每孔加入25μL处理后的样品、阳性对照和阴性对照。如果样品含有较高葡萄糖,例如组织样品,同一样品需同时设定两孔,在【3.2.1样品葡萄糖浓度检测】时一孔加入葡萄糖淀粉酶消化液,一孔加入不含葡萄糖淀粉酶的葡萄糖淀粉酶缓冲液,两孔检测的差值即为糖原浓度

    9)按【3.2.1样品葡萄糖浓度检测】进行糖原检测

注意事项
  • 1)不同批次不建议混用

    2)非经严格验证,不建议改变检测试剂用量

    3)仅限科研用途

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