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CD45 Nanobeads, mouse(RUO)

价格 1,700.00 供应商现货 : 3-5个工作日
货号 S0K0002
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产品规格
  • 储存条件

    避光保存于2–8℃,不可冻存。

  • 成分组成

    偶联抗鼠CD45单抗的葡聚糖包覆的四氧化三铁纳米磁珠,PBS缓冲体系含BSA及Poloxamer 188。

  • 分选能力

    2 mL磁珠:适用于1×10⁹总细胞量,最多可完成100次分选

    1 mL磁珠:适用于5×108总细胞量,最多可完成50次分选

  • 分选原理

    采用CD45 Nanobeads, mouse对CD45⁺细胞进行磁性标记。随后将细胞悬液上样至置于分选器磁场中的分选柱内。被磁性标记的CD45⁺细胞将滞留于柱内,未标记的细胞则流出,该组分即为去除CD45⁺细胞后的阴性组分。将分选柱移出磁场后,被磁捕获的CD45⁺细胞可洗脱获得,即为阳性分选组分。若需提高纯度,含有CD45⁺细胞的阳性组分需通过第二个分选柱再次进行分离。

背景介绍
  • CD45 Nanobeads, mouse用于从淋巴组织和非淋巴组织中对白细胞进行阳性选择或去除。CD45抗原表达于所有造血来源的细胞,但红细胞和血小板除外。

操作步骤
  • 以S Separation Column为例

    步骤

    操作方法

    剂量 / 时间

    磁性标记

    1

    计数细胞总数

    2

    细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清

    400×g,7 min

    3

    每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬

    Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整

    重悬细胞

    4

    每1×10⁷细胞加20 μL CD45 NanoBeads

    Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加

    1×10⁷细胞加 20 μL

    5

    充分混匀,2–8℃避光孵育15min

    孵育15 min

    6

    每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g 离心7分钟,完全吸弃上清

    1×10⁷细胞加1 mL

    7

    500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞

    重悬细胞

    磁性分选

    8

    将S型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,500 μL缓冲液润洗分选柱

    润洗分选柱

    9

    将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞)

    10

    缓冲液洗涤柱子3次,每次500μL,待柱内液体完全流空后再加下一次

    3×500 μL缓冲液

    11

    合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上

    12

    向柱内加入1mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞

    Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次

    收集目的细胞


    以L Separation Column为例

    步骤

    操作方法

    剂量 / 时间

    磁性标记

    1

    计数细胞总数

    2

    细胞悬液400×g离心7分钟,完全吸弃上清

    400×g,7 min

    3

    每1×10⁷细胞加80 μL缓冲液重悬

    Note: 缓冲液用量根据样品体积等比例调整

    重悬细胞

    4

    每1×10⁷细胞加20 μL CD45 NanoBeads

    Note:细胞量增大时,所有试剂体积按比例同步增加

    1×10⁷细胞加 20 μL

    5

    充分混匀,2–8℃避光孵育15min

    孵育15 min

    6

    每1×10⁷细胞加1 mL缓冲液洗涤,400×g离心7分钟,完全吸弃上清

    1×10⁷细胞加1 mL

    7

    500 μL缓冲液最多重悬1×108细胞

    重悬细胞

    磁性分选

    8

    将L型分选柱放入对应磁力分选器磁场中,3 mL缓冲液润洗分选柱

    润洗分选柱

    9

    将细胞悬液上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞)

    10

    缓冲液洗涤柱子3次,每次3 mL,待柱内液体完全流空后再加下一次

    3×3 mL缓冲液

    11

    合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上

    12

    向柱内加入5mL缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞

    Note:如需更高纯度,换用新柱重复分选1次

    收集目的细胞


  • 验证数据

    • 从C57BL/6小鼠脾细胞和 Jurkat(Human T cell leukemia T lymphocyte)的混合细胞中富集或去除CD45+ T细胞。随后使用anti-CD45 (clone: 30-F11) Alexa Fluor™ 488进行荧光染色,并圈选活细胞群进行分析。

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