抗His标签单克隆抗体的制备、鉴定及其在融合蛋白检测与纯化中的应用研究

本研究旨在制备并鉴定抗His标签单克隆抗体(mAb),初步构建针对带His标签融合蛋白的检测与纯化体系。采用碳化二亚胺法合成His-tag完全抗原,以此免疫BALB/c小鼠,并运用杂交瘤技术实现细胞融合。通过有限稀释法与间接ELISA法对阳性杂交瘤细胞株进行克隆和筛选,常规制备腹水后,利用辛酸-硫酸铵法进行纯化,并对纯化的mAb展开特异性鉴定。

免疫/炎症His标签单克隆抗体杂交瘤技术
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摘要:本研究旨在制备并鉴定抗His标签单克隆抗体(mAb),初步构建针对带His标签融合蛋白的检测与纯化体系。采用碳化二亚胺法合成His-tag完全抗原,以此免疫BALB/c小鼠,并运用杂交瘤技术实现细胞融合。通过有限稀释法与间接ELISA法对阳性杂交瘤细胞株进行克隆和筛选,常规制备腹水后,利用辛酸-硫酸铵法进行纯化,并对纯化的mAb展开特异性鉴定。结果表明,His-tag完全抗原偶联成功,成功获取1株能分泌His标签mAb的杂交瘤细胞株,腹水效价高于1:10⁶,该mAb与其他融合蛋白标签无交叉反应,在含His标签融合蛋白的鉴定实验中表现良好。本研究成功制备的His标签mAb为带His标签融合蛋白的研究与应用提供了有力工具。

 

一、引言

 

在分子生物学和蛋白质工程领域,His标签因其独特的优势而被广泛应用。它是一种短肽序列,通常由6个组氨酸残基组成,能够与金属离子(如镍离子)特异性结合,便于通过亲和层析技术对融合蛋白进行纯化。同时,His标签的存在也为抗体的制备提供了可能,通过制备抗His标签单克隆抗体,可实现对带His标签融合蛋白的特异性检测和纯化,在蛋白质表达、定位、相互作用研究等方面具有重要意义。

 

二、材料与方法

 

(一)材料

  1. 实验动物:BALB/c小鼠。
  2. 主要试剂:His标签肽、载体蛋白、碳化二亚胺、细胞培养基、杂交瘤细胞融合试剂、ELISA检测试剂盒、辛酸、硫酸铵等。
  3. 仪器设备:酶标仪、细胞培养箱、离心机、超净工作台等。

(二)方法

  1. His-tag完全抗原的合成:采用碳化二亚胺法将His标签肽与载体蛋白进行偶联,通过优化反应条件,如反应时间、温度、pH值以及碳化二亚胺的浓度等,确保偶联反应的高效进行。偶联完成后,利用凝胶过滤层析等方法对完全抗原进行纯化,并通过紫外分光光度计测定其浓度和偶联比。
  2. 动物免疫:将纯化后的His-tag完全抗原与佐剂混合,对BALB/c小鼠进行多次免疫接种,定期采集小鼠血清,采用间接ELISA法检测血清中抗体的效价和特异性,当抗体效价达到一定水平后,进行细胞融合。
  3. 细胞融合与筛选:采用杂交瘤技术,将免疫小鼠的脾细胞与骨髓瘤细胞进行融合。融合后的细胞在选择性培养基中培养,通过有限稀释法对阳性克隆进行亚克隆,同时利用间接ELISA法对克隆化细胞进行筛选,确保获得的杂交瘤细胞株能够稳定分泌抗His标签的mAb。
  4. 腹水制备与抗体纯化:将筛选得到的阳性杂交瘤细胞株注射到BALB/c小鼠腹腔内,诱导小鼠产生腹水。收集腹水后,采用辛酸 - 硫酸铵法对腹水中的mAb进行纯化,去除杂质蛋白,提高抗体的纯度。
  5. mAb特异性鉴定:通过Western blot、免疫荧光等方法对纯化后的mAb进行特异性鉴定,检测其与带His标签融合蛋白的结合能力,同时验证该mAb与其他常见融合蛋白标签(如Flag标签、Myc标签等)是否存在交叉反应。

 

三、结果

 

(一)His-tag完全抗原的合成与鉴定

通过碳化二亚胺法成功合成了His-tag完全抗原,凝胶过滤层析结果显示,完全抗原的纯度较高,紫外分光光度计测定表明,偶联比符合预期,为后续的动物免疫提供了高质量的抗原。

(二)杂交瘤细胞株的筛选与克隆

经过细胞融合、筛选及克隆化过程,成功获得1株能够稳定分泌His标签mAb的杂交瘤细胞株。间接ELISA检测结果显示,该细胞株分泌的抗体与His-tag完全抗原的结合能力较强。

(三)腹水制备与抗体效价测定

常规制备腹水后,采用间接ELISA法测定腹水效价,结果显示腹水效价高于1:10⁶,表明制备的mAb具有较高的浓度和活性。

(四)mAb特异性鉴定

Western blot和免疫荧光实验结果表明,该mAb能够特异性识别带His标签的融合蛋白,与其他融合蛋白标签无交叉反应,说明该mAb具有良好的特异性。在含His标签融合蛋白的鉴定实验中,该mAb能够准确检测出目标蛋白,取得了满意的效果。

 

四、讨论

 

本研究成功制备了1株抗His标签单克隆抗体,为带His标签融合蛋白的研究与应用提供了重要的工具。在抗原合成方面,碳化二亚胺法是一种有效的偶联方法,通过优化反应条件,能够获得高质量的完全抗原。在细胞融合和筛选过程中,有限稀释法和间接ELISA法的结合使用,确保了能够筛选出稳定分泌特异性抗体的杂交瘤细胞株。腹水制备和抗体纯化步骤保证了mAb的产量和纯度,为后续的实验和应用提供了可靠的基础。

然而,本研究仍存在一定的局限性。例如,虽然该mAb与其他常见融合蛋白标签无交叉反应,但在更复杂的生物样本中,其特异性仍需进一步验证。此外,对于mAb的稳定性、亲和力等性能指标,还需要进行更深入的研究。未来的工作可以围绕提高mAb的性能、拓展其应用范围等方面展开,例如开发基于该mAb的检测试剂盒,用于临床诊断或生物制药领域。

 

五、结论

 

本研究成功制备了1株His标签单克隆抗体,该抗体具有较高的效价和特异性,能够特异性识别带His标签的融合蛋白。这为带His标签融合蛋白的研究和应用提供了有力的工具,有助于推动分子生物学和蛋白质工程领域的发展。同时,本研究的方法和经验也为后续相关抗体的制备和研究提供了参考。

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